การเก็บสิ่งส่งตรวจ (Specimens Collection)

1.1 ปิด Sticker เป็นแนวตรง ไม่ม้วนเกลียว / พันรอบหลอดเก็บเลือด (หากเป็นขวด HemoCulture (Fluorescent) ห้ามปิดทับบาร์โค้ด)

1.2 เมื่อปิด Sticker แล้วยังคงมองเห็นแนวแถบสีที่บอกชนิดของหลอดเลือด และเว้นชองวางให้เห็นขีดบอกระดับเลือดที่ตองเจาะ และระดับเลือดที่ใส่ลงมาในหลอด

1.3 หาก Sticker ยาวเกินหลอดเลือด ให้ตัดส่วนที่เกินออกได้ โดยให้เหลอสวนที่เป็น ชื่อ – นามสกุลหรือจะพบ Sticker ส่วนที่เกินเข้าหากันได้

2.1 นักเทคนิคการแพทย์ใส่เสื้อคลุม และ สวมถุงมือ

2.2 แนะนำตัว ตรวจสอบข้อมูลคนไข้ให้ถูกตองตรงกับใบส่งตรวจก่อนทำการเจาะเลือด

2.3เลือกชนิดของหลอดใส่ตัวอย่างเลือดที่เหมาะสมต่อประเภทการตรวจ เขียน ชื่อ-สกุล และรายการตรวจของคนไข้ ที่ข้างหลอดให้เรียบร้อย

2.4 เตรียมอุปกรณ์เจาะเลือด ได้แก่ หลอดใส่ตัวอย่างเลือดที่เขียน ชื่อ-สกุล และรายการตรวจแล้ว เข็มเจาะเลือด Syringe สาลีชุบแอลกอฮอล์สำหรับฆ่าเชื่อ สำลีแห้ง พลาสเตอร์ เป็นต้น จุดเรียงหลอดเก็บตัวอย่างตามลำดับที่เหมาะสม

2.5ใช้สายรัด (Tourniquet) รัดบริเวณต้นแขนเพื่อให้เห็นเส้นเลือดดำชัดเจนขึ้น เลือกบริเวณเจาะใต้ข้อพับเล็กน้อย ยกเว้นบางกรณีอาจต้องเจาะจากบริเวณข้อมือ หรือข้อเท้า

2.6 ทำการเจาะเลือดโดย

2.6.1 รัดสายรัดไม่เกิน 1 นาที

2.6.2 ให้คนไข้กำมือโดยไม่ต้องเกรงกล้ามเนื้อ

2.6.3 ตรวจสอบตำแหน่งที่จะเจาะอีกครั้ง โดยใช้นิ้วสัมผัสเส้นเลือดเพื่อติดตามเส้นทางเดินของเส้นเลือด

2.6.4 ทำความสะอาดผิวหนังบริเวณที่จะเจาะเลือดด้วยสำลีชุบแอลกอฮอล์ โดย เช็ดจากจุดศูนย์กลางหมุนวนเป็นวงกลมออกสู่ด้านนอก รอจนแอลกอฮอล์แห้ง ห้ามนิ้วสัมผัสเส้นเลือดอีก

2.6.5 ทำการเจาะเลือด โดยใช้นิ้วหัวแม่มือดึงผิวหนังใต้ตำแหน่งที่จะเจาะ (1-2นิ้ว) ให้ตึง / หงายปลายตัดของเข็มขึ้นแทงลงในตำแหน่งที่กำหนด โดยให้เข็มทำมุมประมาณ 15 องศากับแขนคนไข้คอยๆดึงก้าน Syringe เพื่อเก็บเลือด ให้คนไข้คลายมือและดึงสายรัดออก

2.6.6 ใช้สำลีแห้งปราศจากเชื้อกดบริเวณรอยเจาะเบาๆพร้อมถอดเข็มออก/ให้คนไข้กดห้ามเลือดประมาณ 2-3นาที และปิดพลาสเตอร์ เมื่อเลือดหยุดไหลแล้ว

2.6.7 ทิ้งหัวเข็มลงในภาชนะสำหรับทิ้งของมีคม

2.6.8 ใส่เลือดลงในหลอดเลือด ปริมาณความเหมาะสมสำหรับการตรวจวิเคราะห์ ทิ้ง Syringeในถังขยะติดเชื้อ จากนั้นปิดฝาและผสมหลอดเลือดที่มีสารกันเลือดแข็งทันที โดยพลิกหลอดเลือดกลับไปมา

2.7 กรณีที่เป็น Tube Clotted blood เมื่อเจาะเลือดเสร็จแล้วให้ปิดฝา และวางหลอดเลือดทิ้งไว้ประมาณ 15-20 นาที ให้เกิดการแข็งตัวของเลือด เพื่อป้องกันการเกิด Fibrin (ไม่ควรวางเกิน2ชั่วโมง)

2.8 กล่าวขอบคุณผู้ป่วยในความร่วมมือ เก็บอุปกรณ์ และนำตัวอย่างตรวจส่งห้องปฏิบัติการโดยเร็วเพื่อทำการตรวจวิเคราะห์ต่อไป

2.9กรณีเจาะเก็บเลือดจากเส้นเลือดฝอยบริเวณผิวหนัง (ปลายนิ้ว) ปฏิบัติดังนี้

2.9.1ตรวจสอบชื่อ-สกุล ผู้ป่วยให้ตรงกับใบส่งตรวจ และเอกสารประกอบอื่นๆ

2.9.2 เตรียมอุปกรณ์เจาะเลือด เพื่อเก็บเลือดตามรายการตรวจ

2.9.3เลือกตำแหน่งที่จะเจาะเลือด (ควรเลือกนิ้วกลาง หรือ นิ้วนาง) นวดเบาๆเพื่อเพิ่มอัตราการไหลเวียนโลหิต

2.9.4 เช็ดทำความสะอาดบริเวณที่จะเจาะด้วยสำลีปราศจากเชื้อ ชุบแอลกอฮอล์แล้วรอให้แห้ง

2.9.5นำlancet ออกจากห่อบรรจุโดยไม่สัมผัสบริเวณปลาย lancet

2.9.6จับนิ้วมือคนไข้ให้กระชับและนิ่ง จากนั้นแทง lancet ในลักษณะขวางลายนิ้วมือเพื่อให้เลือดไหลออกมาอย่างอิสระ ทิ้ง lancet ลงในภาชนะสาหรับทิ้งของมีคม

2.9.7ใช้สำลีแห้งปราศจากเชื้อ เช็ดเลือดหยดแรกออกก่อนเก็บเลือด (อาจใช้capillary tubeช่วยถ่ายเลือดลงหลอดเลือด) ขณะเก็บเลือดในภาชนะอาจนวดเบาๆ จากโคนนิ้วถึงปลายนิ้วเพื่อเลือดไหลดีขึ้น ไม่ควรบีบเค้น เพราะอาจทำให้เม็ดเลือดแดงแตก

2.9.8 เมื่อเก็บเลือดเสร็จแล้ว ใช้สำลีแห้งปราศจากเชื้อกดปิดปากแผลจนเลือดหยุดไหลและใช้พลาสเตอร์ปิด

2.9.9 นำเลือดคนไข้ส่งห้องปฏิบัติการโดยเร็ว เพื่อทำการตรวจวิเคราะห์ต่อไป

2.10 ข้อควรระวัง

2.10.1 ห้ามเจาะเลือดในตำแหน่งที่สัมผัสแล้วรู้สึกถึงการเต้นของชีพจร เนื่องจากเป็นเส้นเลือดแดง

2.10.2 ห้ามเจาะเลือดบริเวณที่สัมผัสแล้วแข็งไม่ยืดหยุ่น เนื่องจากอาจเป็นเส้นเอ็นซึ่งดูคลายเส้นเลือด

2.10.3ไม่ควรแทงเข็มลึกเกินไป เพราะอาจมีโอกาสแทงถูกเส้นประสาท หรือเกิด Hematomaกรณีคนไข้เจ็บมากให้หยุดเจาะบริเวณนั้น แล้วพิจารณาหาตำแหน่งใหม่

2.10.4 ในการเจาะเลือดในแต่ละครั้งต้องใช้เข็มใหม่เสมอ หากเจาะ 2 ครั้งแล้วยังไม่ได้ ควรเปลี่ยนผู้เจาะที่มีความชำนาญสูงกวา

2.10.5 ข้อควรระวังในการเจาะเลือดไม่ให้เกิดการแตกของเม็ดเลือดแดง (Hemolysis) มีดังนี้

2.10.5.1 ไม่ใช้เข็มขนาดเล็กเกินไป

2.10.5.2 ไม่ควรดัง plunger ของ syringe เร็วเกินไป

2.10.5.3 ไม่ฉีดเลือดสู่หลอดเลือดแรงเกินไป

2.10.5.4 ไม่ควรเจาะเลือดขณะที่บริเวณที่เจาะนั้นยังไม่แห้ง

2.10.5.5 ไม่ควร Mix หลอดเก็บเลือดเร็วๆ แรงๆ

2.10.5.6 ไม่ควรกวนเลือดอย่างรุนแรงก่อนนำไปปั่นเหวี่ยง

ขั้นตอนวิธีการใส่เลือดลงหลอดเก็บตัวอย่างตามลำดับก่อน-หลัง

กรณีที่มีการส่งตรวจหลายรายการทดสอบ และต้องใช้หลอดเลือดหลายหลอด ควรลำดับการใส่เลือดลงหลอด ดังนี้

1. ขวดสำหรับการเพาะเชื้อ Hemo Culture

2. หลอดสำหรับการทดสอบ Coagulation หลอด Sodium Citrate (จุกสีฟ้า)

3. หลอด Clotted blood (จุกสีขาว)

4. หลอด EDTA (จุกสีม่วง)

5. หลอด NaF (จุกสีเทา)

• Random Urine:ให้เก็บปัสสาวะส่วนกลาง (Mid Stream Urine) ตามปริมาตรที่ระบุ ดังนี้

1) ทำความสะอาดบริเวณอวัยวะขับถ่ายก่อนการเก็บ

2) ถ่ายปัสสาวะช่วงแรกทิ้งไปก่อน แล้วเก็บปัสสาวะช่วงกลางให้ได้ปริมาณไม่น้อยกวา 10 ml.

3) ใส่ในภาชนะสะอาดที่ห้องปฏิบัติการจัดเตรียมไว้ ซึ้งมีฉลากข้อมูลผู้ป่วย

4) ถ่ายปัสสาวะช่วงท้ายทิ้งไป

5) ปิดฝาภาชนะให้สนิท

•ปัสสาวะ 24 ชั่วโมง (24hrs.): เก็บปัสสาวะให้ครบ 24 ชั่วโมง ดังนี้

1. เตรียมภาชนะพร้อมสารรักษาสภาพปัสสาวะ (ขึ้นกับชนิดของการทดสอบที่ระบุ)

2. ก่อนจบเวลาให้ถ่ายปัสสาวะทิ้งไปให้หมด แล้วเริ่มนับเวลา

3. เริ่มจับเวลา ให้ครบ 24 ชั่วโมง เช่น 6.00 น. – 6.00 น. วันรุ่งขึ้น

4. ในช่วงระหว่างที่จับเวลา ให้เก็บปัสสาวะที่ถ่ายทุกครั้ง ใส่ในภาชนะที่เตรียมไว้

5. เมื่อครบ 24 ชั่วโมง ให้ถ่ายปัสสาวะครั้งสุดท้ายเก็บใส่ภาชนะ

6. ต้องเก็บให้ครบตลอด 24 ชั่วโมง เพราะหากมีครั้งใดลืมเก็บใส่ภาชนะ จะทำให้ผลการตรวจไม่ถูกต้อง

7. นำส่งห้องปฏิบัติการพร้อมใบส่งตรวจ โดยระบุปริมาตรที่เก็บได้ทั้งหมดด้วยทุกครั้ง

• สำหรับการตรวจทดสอบ Protein, Creatinine, Calcium, Phosphate, Uric acid, Glucose, Sodium,Potassium, Chloride ให้เก็บปัสสาวะในอุณหภูมิ4°C

• สำหรับการทดสอบ VMA ใช้6 N.HCL 30 ml. เป็นสารรักษาสภาพ

•เก็บอุจจาระในภาชนะทับ ปิดฝาให้เรียบร้อย หากอุจจาระมีมูกเลือดให้เก็บสวนที่เป็นมูกเลือดด้วย และให้เก็บสูงปริมาณพอสมควร (ประมาณ 5 กรัม) และปิดฉลากระบุชื่อผู้ป่วยบนภาชนะ

•ห้ามสูงเป็นกระดาษป้ายอุจจาระ

• เก็บใสขวดแก้วที่สะอาดปราศจากเชื้อ (ขวด Sterile) ในปริมาณที่พอเพียงต่อการทดสอบ ปิดฉลากระบุชื่อผู้ป่วยบนภาชนะ และทำการจัดสิ่งที่นท

• กรณีส่งตรวจเพาะเชื้อ ห้ามเก็บในตู้เย็น เพราะอาจทำให้เชื้อบางชนิดตายได้ เช่น Neisseria meningitidis

• กรณีที่สูงหลายรายการทดสอบ

- ขวดที่1 สำหรับส่งตรวจทางเคมีและอิมมูโนวิทยา

- ขวดที่2 สาหรบสงตรวจจุลชีววิทยา

- ขวดที่3 สำหรับส่งตรวจนับจำนวนของเซลล์และนับแยกชนิดของเซลล์

• เก็บสิ่งส่งตรวจ ให้ถูกตำแหน่ง ก่อนที่ผู้ป่วยได้รับสารตานจุลชีพ

• เลือกใช่ภาชนะ หรออาหารเลี้ยงเชื้อให้ถูกตองเหมาะสมกับประเภทของตัวอย่าง เช่น

6.1 เลือด

- ขวด Hemoculture ที่เก็บในตู้เย็นต้องนำออกมาวางไว้ที่อุณหภูมิห้อง และรอให้ขวดมีอุณหภูมิเท่าอุณหภูมิห้องก่อนนำไปใช้งาน

- เช็คจุกยางที่ปิดปากขวดด้วย 70% แอลกอฮอล์ (ไม่ควรใช้ทิงเจอร์ไอโอดีน เพราะจะทำให้จุกยางเสอมสภาพ) รอให้แห้งก่อนใส่เลือด

- ควรเปลี่ยนหัวเข็มใหม่ ก่อนฉีดเลือดลงในขวด Hemoculture

- กรณีที่ไมสามารถส่งขวด Hemoculture มายังห้องปฏิบัติการได้ภายในวันเจาะเลือด ให้นำขวดไปอบที่อุณหภูมิ 35-37°C หรือวางที่อุณหภูมิห้อง ห้ามแชในตู้เย็น

- ห้ามเจาะเลือดเพื่อใช้ในการทดสอบอื่นๆ ในคราวเดียวกัน เพราะอาจเกิดการปนเปื้อนได้

- กรณีที่ใช้ขวด Hemoculture (Convention) ให้เจาะเลือด 5 ml. สำหรับผู้ใหญ่ และ 2 ml. สำหรับ เด็ก

-กรณีที่ใช้ขวด Hemoculture (Fluorescent) ให้เจาะเลือด 8-10 ml. สำหรับผู้ใหญ่ และ1-3 ml.สำหรับเด็ก

- ควรเจาะขณะไข้เริ่มขึ้น ก่อนให้ยาต้านจุลชีพ หรือก่อนให้ยาต้านจุลชีพครั้งตอไป ควรเจาะอย่างน้อย 2 ตัวอย่างตรวจ และไม่เกิน 3 ตัวอย่างตรวจใน 24 ชม. (เด็กเลิกควรเจาะ 1-2 ตัวอย่างตรวจ) ห่างกันอย่างน้อย 30-60 นาที โดยเจาะคนละตำแหน่ง (แขนขวา – แขนซ้าย)

6.2 นำไขสันหลังและสารคัดหลั่งอื่นๆจากร่างกาย

ควรเจาะให้ได้ปริมาตร 1-2 ml. โดยทำความสะอาดบริเวณที่จะเจาะเช่นเดียวกับการเจาะเลือดโดยใส่น้ำไขสันหลังในภาชนะที่ปราศจากเชื้อ ตัดฉลากข้อมูลผู้ป่วยให้ครบถ้วนตามข้อกำหนด แล้วนำส่งห้องปฏิบัติการทันที่ ห้ามเก็บน้ำไขสันหลังในตู้เย็นขณะรอส่งเพราะอาจจะทำให้เชื้อบางชนิดตายได้ ถ้าไม่สามารถนำส่งได้ในเวลาให้เก็บในตู้ 37 °C หรือวางที่อุณหภูมิห้อง

6.3 Transport Medium

ใช้Swab เก็บสิ่งส่งตรวจที่ไม่สามารถเจาะหรือดูดได้ ซึ่งเป็นหลอดพลาสติกที่บรรจุTransport mediumสิ่งส่งตรวจที่เก็บด้วย Swab ได้แก่Throat swab, หนอง เป็นต้น หลังการใช้Swab เก็บสิ่งส่งตรวจแล้วให้ใสSwab ลงในหลอด media เพื่อไม่ให้เชื้อตาย

6.4 Rectal Swab

เป็นการเก็บสิ่งส่งตรวจ เพื่อหาเชื้อแบคทีเรียก่อโรคในลำไส้ โดยใช้Swab ปราศจากเชื้อจุ่มลงในอาหารเลี้ยงเชื้อCary-Blair หลังจากนั้นสอด Swab เข้าไปในทวารหนักของผู้ป่วย ให้ลึกประมาณ 1.0 - 1.5 นิ้ว หมุน Swab ให้ครบรอบ ดึงออกใส่ในหลอดอาหารเลี้ยงเชื้อ Cary - Blair ให้ลึกถึงก้นหลอด นำส่งห้องปฏิบัติการภายใน 24ชั่วโมงหากเกิน10 ชั่วโมงให้เก็บที่อุณหภูมิ 2-8°C

6.5 อุจจาระ

เก็บอุจจาระที่ถ่ายใหม่ๆ บริเวณที่มีมูกเลือดหรือมูกหนองประมาณ 1-2 กรัม ใส่ภาชนะปากกว้างมีฝาปิดสนิทนำส่งภายใน 1 ชั่วโมง ถ้าไม่สามารถนำส่งได้ทันที่ ให้เก็บในตู้เย็นที่ 4 °C ไม่เกิน 24 ชั่วโมง การเพาะเชื้อCampylobacter spp.ให้เก็บส่งเป็นอุจจาระ

6.6 ปัสสาวะ

ถ้าเป็นปัสสาวะที่ไม่ใช่Mid Stream Urine ต้องระบุลงในใบส่งตรวจ เช่น Catheter urine ปัสสาวะที่ส่งเพาะเชื้อต้องระบุเวลาเก็บให้ชัดเจน และนำส่งห้องปฏิบัติการทันที่ ถ้าไม่สามารถนำส่งทันเวลาให้เก็บปัสสาวะในตู้เย็นห้ามเก็บไว้ที่อุณหภูมิห้อง และห้ามเก็บปัสสาวะใส่Transport medium

6.7 เสมหะ

- ลักษณะของสิ่งส่งตรวจควรเป็น มูก หนอง มีเลือดปน

- ช่วงเวลาการเก็บที่เหมาะสม คอ เก็บตอนเช้าโดยทาความสะอาดในช่องปากด้วยวิธีการบ้วนปากด้วยน้ำสะอาดเพื่อลดการปนเปื้อนของน้ำลายและเชื้อในชองปาก ไม่ควรใช้นายาฆ่าเชื้อบ้วนปาก

- ควรให้ผู้ป่วยไอจากลำคอเพื่อให้ได้เสมหะที่แท้จริง

- บ้วนใส่ขวดปากกวาง ที่สะอาดและแห้งมฝาปิดสนิท

- นำส่งภายใน 2 ชั่วโมง ถ้าไม่สามารถนำส่งได้ให้เก็บในตู้เย็น 4 °C ไม่เกิน 24 ชั่วโมง

6.8 ชิ้นเนื้อ

- ให้เก็บตรงตำแหน่งขอบ หรือรอยโรคที่คาดว่ามีเชื้อเจริญอยู่ใส่ภาชนะแห้งปราศจากเชื้อ อาจเติมน้ำเกลอปราศจากเชื้อลงไปเล็กน้อยเพื่อกันมิให้ชิ้นเนื้อแห้ง ห้ามแช่ในฟอร์มาลีน

- ควรเก็บใหม่ขนาดปริมาณ 1 ลบ.ซม.

- นำส่งห้องปฏิบัติการทันที่ ถ้าไม่สามารถนำส่งได้ให้เก็บที่อุณหภูมิห้อง ห้ามแช่เย็น

6.9 สิ่งส่งตรวจเพาะเชื้อแอนแอโรบส์

ควรเก็บตัวอย่างในบริเวณที่ไม่มีเชื้อประจำถิ่นโดยใส่ใน Thioglycolate tube ซึ่งก่อนนำมาใช้ต้องดูสภาพของน้ำยายังคงใสไม่มีสี ถ้ามีสีชมพูบ่งชี้ว่ามีออกซิเจนอยู่ในขวดจึงไม่ควรใช้ และถ้ายังไม่ได้ใช้ควรเก็บที่อุณหภูมิห้องในที่มืด ห้ามเก็บในตู้เย็น

7.1 Heparinized Peripheral Blood:ใช้Syringe 5 ml. ดูด Lithium Heparin เพื่อเคลือบแล้วฉีดไล่ออกจาก Syringe และเปลี่ยนเข็มใหม่เพื่อเจาะเลือด น้ำส่งทั้งSyringe ขณะรอนำส่งให้เก็บในตู้เย็น (ห้ามแช่Freeze หรือแช่ในน้ำแข็ง)

7.2น้ำคร่ำ(Amniotic Fluid):เก็บโดยวิธีAmniocentesis จำนวน 15-20 ml. บรรจุใน Syringe หรือภาชนะปลอดเชื้อ ขณะรอนำส่งให้ไว้ที่อุณหภูมิห้อง (ห้ามแช่Freeze หรอแช่ในน้ำแข็ง)

7.3 ชิ้นเนื้อ (Tissue): ใส่ชิ้นเนื้อใน 0.85% Sterile NaClในภาชนะปลอดเชื้อ (ห้ามแช่Formalin) เก็บที่อุณหภูมิห้อง

7.4 เลือดจากสายสะดือทารก (Cord blood):เก็บโดยวิธีCordocentesisจานวน 1-2 ml. บรรจุในSyringe หรือภาชนะปราศจากเชื้อที่ผสม Lithium Heparin ปริมาตร 50 ไมโครลิตร ต่อเลือด 2 ml.เพื่อไม่ให้เลือดแข็งตัว

8.1 เจาะเลือด 5 ml. ใส่ในหลอดที่มีสารกันเลือดแข็งชนิด EDTA ส่งตรวจภายใน 6 ชั่วโมง

8.2หากไม่สามารถส่งเลือดภายในเวลาที่กำหนด ควรแยกPlasma ด้วย Aseptic Technique แล้วเก็บในตู้เย็นช่องแช่แข็ง

8.3 แยก Plasma โดยการปั่นที่800-1,600 รอบ/นาที นาน 20 นาที

9.1 ชิ้นเนื้อแช่ใน 10% Formalin น้ำยาควรมีปริมาณมากกว่าชิ้นเนื้อ 10 เท่า

9.2 Fluid For Cytology เก็บปริมาณ 50-200 ml. ใส่ขวด Sterileโดยไม่ต้องเติมน้ำยา Fixative ใดๆ ทั้งสิน ถ้ายังไม่ได้ส่งทันที่ให้เก็บในตู้เย็นช่องปกติ (4-6 °C) ห้ามแช่ช่องแข็ง

9.3 PAP Smear, FNA หลงป้ายให้แช่ใน 95% alcohol ทันที่โดยไม่ต้องรอให้แห้ง ในกรณีส่งแบบเปียกไม่ควรติดคลิป ถ้าส่งแบบแห้งให้แช่ทิ้งไว้อย่างน้อย 30 นาที แล้วนำมาผึ่งให้แห้งที่อุณหภูมิห้องห่อด้วยกระดาษแล้วนำส่ง (ไม่ควรเก็บสไลด์ที่ผึ่งแห้งแล้วไว้เกิน 1 สัปดาห์)

9.4 การเก็บสิ่งส่งตรวจคัดกรองมะเร็งปากมดลูก วิธีLiquid based cytology

9.4.1 การเตรียมตัวก่อนเขารับการตรวจคัดกรอง

9.4.1.1 ต้องไม่มีการตรวจภายในมาก่อนในช่วง 24 ชั่วโมง

9.4.1.2 ไม่มีการเหน็บยาในช่องคลอดมาก่อนตรวจ 48 ชั่วโมง

9.4.1.3 ห้ามล้างหรือทำความสะอาดภายในช่องคลอดก่อนมาตรวจ 48 ชั่วโมง

9.4.1.4 งดการมีเพศสัมพันธ์ก่อนมารับการตรวจ 48 ชั่วโมง

9.4.2 วิธีการเก็บ

9.4.2.1 ใช้แปรงเก็บเซลล์บริเวณปากมดลูก (เก็บโดยแพทย์)

9.4.2.2 นำเซลล์ที่เก็บได้ทั้งหมดจุ่มลงในน้ำยารักษาสภาพเซลล์วิธีการแบบ Liquid based

9.4.2.3 นำกระป๋องน้ำยาที่มีเซลล์เข้าเครื่องเตรียมสไลด์อัตโนมัติ หรือ Manual

9.4.2.4 เซลล์ที่ปรากฏบนสไลด์จะเรียงเป็นแผ่นบาง

9.4.2.5 คนหาเซลล์มะเร็งได้ง่ายขึ้น เนื่องจากไม่มีเม็ดเลือดแดงและมูกเลือด มาบดบังเซลล์ที่ผิดปกติ

หมายเหตุ: ขอแนะนาเพื่อเพิ่มความไวในการตรวจ

- วิธีLiquid based สำหรับผู้หญิงทุกวัย

- Liquid based พลัสเอชพีวี (Liquid based Plus HPV) สำหรับผู้หญิงที่มีอายุ30 ปี ขึ้นไป

(โปรดศึกษารายละเอียดเพิ่มเติมในหน้า 81)

9.5 การเก็บสิ่งส่งตรวจเพื่อตรวจหามะเร็งปากมดลูกโดยชุดตรวจ I Check test รายละเอียดตามหนา 80

10.1 ควรเก็บน้ำอสุจิให้หมดทุกครั้งในภาชนะปากกวาง สะอาดและแห้ง

10.2 เก็บน้ำอสุจิด้วยวิธีMasterbationห้ามใช้ถุงยางอนามัย เพราะจะทำให้อสุจิเคลื่อนไหวช้าหรือตาย

10.3 นำส่งห้องปฏิบัติการภายใน 1-2 ชั่วโมง ห้ามแช่เย็น หรือ ถูกความร้อน อุณหภูมิที่เหมาะสมคือ 20 – 40 °C

10.4 งดการมีเพศสัมพันธุ์อย่างน้อย 3 วัน ก่อนเก็บสิ่งส่งตรวจ

11.1 ตรวจแอลกอฮอล์ในเลือด

• การเจาะเลือด ควรใช้น้ำยาฆ่าเชื้ออื่นที่ไม่ใช่แอลกอฮอล์ เช่น ใช้เบตาดีนเช็ดบริเวณที่จะเจาะเลือด

• เจาะเลือด 3 ml. ใส่ในหลอดที่มีสารกันเลือดแข็งชนิด NaF Blood ปิดจุกให้แน่นและพันด้วยParafilmเพื่อป้องกันการระเหยของแอลกอฮอล์

11.2 ตรวจวัดระดับยา เจาะเลือด 5 ml. ใส่ในหลอดเลือดที่ไม่มีสารกันเลือดแข็งตัว (Clotted Blood)และนำส่งเป็น Clotted Blood หรอ ซีรั่ม 2-3 ml

11.3 ในกรณีส่งตรวจ Common Drug Screening ให้ส่งตรวจทั้ง Clotted Blood